產品簡介

Kasumi-1 (急性原粒細胞白血病細胞) 的相關*：體外加帽RNA轉錄合成試劑盒 10次
RNasin（核糖核酸抑制劑） 2500 U
MMLV（H點突變） 2500 U
Oligo（dT）18（500納克/微升） 100微升
Hexamer（隨機引物）（200納克/微升） 100微升
SOCS 20

產品名稱

名稱    Kasumi-1 (急性原粒細胞白血病細胞)

別稱KASUMI-1; Kasumi 1; KASUMI1; Kasumi1

年齡（性別）男；7歲

組織來源外周血，急性原粒細胞白血病

生長特性懸浮細胞

細胞形態原粒細胞

背景描述Kasumi-1細胞具有人急性淋巴白血病細胞的典型特征，是研究人急性淋巴白血病的材料。Kasumi-1細胞是一個帶有8：21號染色體轉位的白血病細胞株，這個轉位使得AML1基因和ETO(或稱MTG8)基因串聯，使融合基因AML1-ETO(也稱作AML1-MTG或RUNX1-CBF2T1)的表達升高，因而細胞產生嵌合的AML1-ETO蛋白。這個蛋白下調CEBPA mRNA、蛋白和DNA的結合活性，而這種結合對粒性白細胞的分化是重要的。Kasumi-1細胞建立于一位急性白血病患者的外周血，Kasumi-1細胞髓過氧化物酶陽性，顯示其髓性成熟的形態。增生試驗顯示，培養的Kasumi-1細胞對IL-3、IL-6、G-CSF(粒細胞集落刺激因子)、GM-CS(粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子)有響應，但對IL-1和IL-5沒有響應。在體外液體培養中分別加入二甲亞砜、G-CSF、IL-5，也沒有觀察到粒性或嗜酸性細胞的成熟。Kasumi-1細胞培養過程中，加入佛波酯可以看到誘導出的巨噬細胞樣細胞。

生物安全等級1

生長培養基RPMI-1640＋20% FBS＋1% P/S

推薦傳代比例1:2-1:4

推薦換液頻率2~3次/周

倍增時間~48-72 hours

凍存條件

凍存液：55% 基礎培養基+40%FBS+5%DMSO

溫度：液氮

培養條件

氣相：空氣，95%；CO2，5%

溫度：37℃

產品特點:

1、 使用方便:不需昂貴設備。

2、 可以處理各種細菌菌體，包括新鮮菌液和冰凍菌體。

3、 將蛋白提取的時間縮短至30分鐘-1小時。

4、 采用溫和的中性裂解組分，保持蛋白活性。

5、 含蛋白穩定劑，提取的蛋白穩定。

6、 紫外檢測蛋白濃度時，背景干擾低。

7、 蛋白酶抑制劑抑制了蛋白的降解，蛋白酶抑制劑配方優化。蛋白酶抑制劑混合物包含6種獨立的蛋白酶抑制劑；每一種抑制劑可特異性抑制某一種或幾種蛋白酶活性。該混合物優化的組成使其可以抑制幾乎所有重要的蛋白酶活性，包括絲氨酸蛋白酶、半胱氨酸酸蛋白酶、天冬氨酸蛋白酶等。

8、 本試劑盒中不有EDTA，與金屬螯和層析等兼容。

細胞處理：

1） 復蘇細胞：將含有1mL細胞懸液的凍存管迅速放入37℃水浴中（水面要低于凍存管蓋部）搖晃解凍，移入事先準備好的含有4mL培養基的15ml離心管中混合均勻。在1000RPM條件下離心4分鐘，棄去上清液，加入1mL培養基后吹勻。然后將所有細胞懸液移入含有5ml培養基的培養瓶中培養過夜。第二天換液并檢查細胞密度。

2） 細胞傳代：如果細胞密度達80%-90%，即可進行傳代培養。

對于貼壁細胞，傳代可參考以下方法：

1.棄去培養上清，用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。

2.加2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培養瓶中，置于37℃培養箱中消化1-2分鐘，然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況，若細胞大部分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲幾下培養瓶后加少量培養基終止消化。

3.按6-8ml/瓶補加培養基，輕輕打勻后吸出，在1000RPM條件下離心4分鐘，棄去上清液，補加1-2mL培養液后吹勻。

4.將細胞懸液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培養基的新皿中或者瓶中。

一、凍存時的注意事項：

1. 在冷凍保存之前，應觀察細胞生長是否良好(log phase) 且存活率高，凍存的細胞密度為80 – 90 ％最佳

2. 冷凍前檢測細胞是否保有其*性質，例如是否有雜細胞或者支原體等。

3. 使用的DMSO 應為試劑級等級，以5~10 ml 小體積分裝，4 度避光保存，勿作多次解凍。使用的甘油也應為試劑級等級，以高壓蒸汽

滅菌后避光保存。在開啟后一年內使用，因長期儲存后對細胞會有毒性。

4. 冷凍保存的細胞濃度：

4-1. 正常的成纖維細胞: 1-3x 10^6 cells/ml

4-2 雜交瘤細胞: 1~3 x 10^6 cells/ml，細胞濃度不要太高，某些雜交瘤會因冷凍濃度太高而在解凍24 小時后。

4-3.貼壁腫瘤細胞: 1 x 10^6，依細胞種類而異。腺癌類的細胞解凍后須較高之濃度，而HeLa 只需1-3 x 10^6 cells/ml。

4-4. 懸浮細胞: 5~10 x 10^6 cells/ml, 而淋巴類細胞須至少5 x 10^6 cells/ml。

5. 冷凍保護劑濃度為5 %或10 ％ DMSO，若是不確定細胞之冷凍條件，在做冷凍保存之同時，亦應作一個backup culture，以防止冷凍失敗。

收到細胞后，請按照以下方法進行操作。

1. 取出25cm2培養瓶，75%酒精消毒，拆下封口膜，放入37℃，5% CO2細胞培養箱中靜置6-8小時或者過夜，以穩定細胞狀態。

2. 待細胞達到80%匯合時準備進行傳代培養。

3. 細胞傳代

1) 吸出25cm2培養瓶中的培養基，用PBS清洗細胞一次；

2) 添加0.125%胰蛋白酶消化液約1mL至培養瓶中，37℃溫浴3min左右；倒置顯微鏡下觀察，待細胞回縮變圓后吸棄消化液，再加入*培養液終止消化；

3) 用吸管輕輕吹打混勻，按1:2或1:3等適當的比例進行接種傳代，然后補充新鮮的*培養基至5mL，放入37℃，5% CO2細胞培養箱中培養；

4) 待細胞*貼壁后，培養觀察。之后每隔2-3天更換新鮮的*培養基。