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          內(nèi)氏放線菌PCR試劑盒PCR定量檢測常見問題

          更新時間:2020-04-02點擊次數(shù):596

          內(nèi)氏放線菌PCR試劑盒PCR定量檢測常見問題的常見原因

          1. cDNA產(chǎn)量的很低可能的原因

          1) RNA模板質(zhì)量低

          2) 對mRNA濃度估計過高

          3)反應體系中存在反轉(zhuǎn)錄酶抑制劑或反轉(zhuǎn)錄酶量不足

          4)同位素磷32過期

          5)反應體積過大,不應超過50μl

          2. 擴增產(chǎn)物在電泳分析時沒有條帶或條帶很淺

          1)zui常見的原因在于您的反應體系是PCR的反應體系而不是RT-PCR的反應體系

          3) 與反應起始時RNA的總量及純度有關

          4) 建議在試驗中加入對照RNA

          5) 第yi鏈的反應產(chǎn)物在進行PCR擴增時,在總的反應體系中的含量不要超過1/10

          6) 建議用Oligo(dT)或隨機引物代替基因特異性引物(GSP)用于第yi鏈合成。由于RNA模板存在二級結(jié)構(gòu),如環(huán)狀結(jié)果,有可能導致GSP無法與模板退火;或SSⅡ反轉(zhuǎn)錄酶無法從此引物進行有效延伸。

          7) 目的mRNA中含有強的轉(zhuǎn)錄中止位點,可以試用以下方法解決:

          a. 將第yi鏈的反應溫度提高至50℃。

          b. 使用隨機六聚體代替Oligo(dT)進行第yi鏈反應。

          3. 產(chǎn)生非特異性條帶

          1)用RT陰性對照檢測是否被基因組DNA污染。如果RT陰性對照的PCR結(jié)果也顯示同樣條帶,則需要用DNase I重新處理樣品。

          2)在PCR反應中,非特異的起始擴增將導致產(chǎn)生非特異性結(jié)果。在低于引物Tm 2至5℃的溫度下進行退火,降低鎂離子或是目的DNA的量將減少非特異性結(jié)果的產(chǎn)生。

          3)由于mRNA剪切方式的不同,根據(jù)選擇引物的不同將導致產(chǎn)生不同的RT-PCR結(jié)果。

          4. 產(chǎn)生彌散(smear)條帶

          1)在PCR反應體系中第yi鏈產(chǎn)物的含量過高

          2)減少引物的用量

          3)優(yōu)化PCR反應條件/減少PCR的循環(huán)次數(shù)

          4)在用DNase處理被DNA污染的RNA樣品時,其產(chǎn)生的寡核苷酸片段會產(chǎn)生非特異性擴增,一般會顯示為彌散背景。

          5. 產(chǎn)生大分子量的彌散條帶

          1)大多數(shù)情況下是由于退火溫度過低而導致的非特異性的起始及延伸產(chǎn)生的

          2)對于長片段的PCR,建議將反應體系中cDNA的濃度稀釋至1:10(或1:100-1:200)

          6. 在無反轉(zhuǎn)錄酶的情況下,對照RNA獲得擴增結(jié)果

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